PIEL-L Latinoamericana Publicacion periodica en dermatologia | Fundada en 1998
Lcdo. MSc. Fernando Gómez-Daza*.
Dra. Gianmary Miozzi**.
Dra. María Verónica Gómez-Bisogno***.
* Licenciado en Bioanálisis, Universidad de Carabobo, Laboratorio de Micología y Enfermedades Tropicales
** Médico Internista, Infectóloga, Centro Policlínico Valencia
*** Médico Cirujano, Ambulatorio 810
Valencia, Venezuela
La Histoplasmosis cutánea por lo general es una manifestación común de la Histoplasmosis Diseminada en pacientes que padecen SIDA con bajos niveles de CD4 y alta viremia. Sus lesiones son polimorfas, desde una mácula, pápula, placa, nódulo hasta úlceras necróticas en piel y mucosas. La importancia de un diagnóstico precoz es fundamental y el método más sencillo, rápido, económico y poco invasivo es tomar muestra por escarificado de algunas de las lesiones, previa restricción de la circulación sanguínea con ayuda de una pinza curva. El material obtenido se extiende en lamina portaobjeto para teñirlo con Giemsa y en medios de cultivo para hongos. El frotis permite observar rápidamente a la levadura del Histoplasma dentro de macrófagos o fuera de ella aproximadamente perentoriamente después de tomada la muestra e iniciar precozmente el tratamiento adecuado. El cultivo es el método confirmatorio, pero tardío, hay que dejar incubando los cultivos hasta por 45 días a temperatura ambiente (28ºC) y a 37ºC ya que es un hongo dimorfo y de desarrollo lento, aunque casi siempre se puede identificar al hongo antes de los 20 días.
El paciente fue referido por la Infectóloga Gianmary Miozzi para toma de muestra de lesiones en piel, estudio micológico y serología de hongos. La toma de muestra consistió en escarificado de pápula en cuello y nódulo en codo realizando el diagnóstico de Histoplasmosis Generalizada aproximadamente a los 30 minutos gracias a la observación de las levaduras de Histoplasma en los frotis teñidos con Giemsa de ambas muestras. El material obtenido se sembró en diferentes medios de cultivo para hongos incubándose a temperatura ambiente (28ºC) y a 37ºC, ya que es un hongo dimorfo. A partir del 5º día de incubación hubo desarrollo en casi todos los medios sembrados de colonias filamentosas y levaduriformes. Se confirmó que correspondían con Histoplasma sp. por las características fenotípicas macroscópicas y microscópicas de los cultivos al observar a los 15 días los tubos del cultivo a 28ºC directamente al microscopio óptico y a través de la técnica del microcultivo en laminilla modificado y presenciar sus órganos de reproducción característicos (macros y microconidios).
Es oportuno informar que los microconidios, por su pequeño tamaño, son los que pueden colonizar los alvéolos pulmonares por medir menos de 5 micrómetros. Estos conidios inhalados son fagocitados por macrófagos transformándose en levaduras. De los pulmones se disemina preferiblemente al sistema retículo endotelial, glándulas suprarrenales, mucosa bucal y piel en estados de inmunosupresión extrema. También hubo desarrollo de la fase levaduriforme a 37ºC del hongo confirmando el dimorfismo térmico.
Según estas características fenotípicas el hongo aislado corresponde al complejo de especies Histoplasma capsulatum var. capsulatum ya que estudios filogenéticos han demostrado una amplia diversidad genética. Utilizando la secuenciación de todo el genoma, Sepúlveda y colaboradores (2017), dieron un primer paso en la revisión del género Histoplasma, dividiendo Histoplasma capsulatum var. capsulatum en 4 especies llamadas H. capsulatum sensu stricto (conocido como linaje Panamá o H81), H. mississippiense (linaje NAm1), H. ohiense (linaje NAm2) e H. suramericanum (linaje LAmA).
El diagnóstico se complementó con la prueba Serología de Hongos por la técnica de inmunodifusión Doble descrito por Oudin y Ouchterlony, detectando la banda ¨M¨ de identidad antigénica contra un control positivo (IMMY ®) que contiene anticuerpos específicos contra los antígenos ¨H¨ y ¨M¨ de H. capsulatum. La banda ¨H¨ aparece más cerca del orificio de anticuerpo, mientras que la banda ¨M¨ está más cerca del orificio del antígeno.
El resultado definitivo se envió a la infectóloga tratante Gianmary Miozzi para su interpretación, diagnóstico definitivo y tratamiento respectivo.
Caso presentado previo consentimiento informado del paciente.
Damos una cálida bienvenida al destacado micólogo internacional Fernando Gómez Daza, quien regresa con su módulo Micopiel a nuestra revista Piel-Latinoamericana. Su contribución en el campo de la micología ha sido invaluable, enriqueciendo el conocimiento y la práctica dermatológica en la región. Su dedicación y pasión por los hongos continúan inspirando a profesionales y estudiantes en esta especialidad médica. ¡Bienvenido de nuevo, Fernando!
Rolando Hernández Pérez
Editor
Piel-L Latinoamericana
Agradecido Dr. Rolando Hernández Pérez por sus palabras que me estimulan mucho a seguir contribuyendo a la educación médica continua.
Espero que esté relanzamiento de Micopiel en Piel Latinoamericana contribuya a la formación de la Micología Médica a los dermatólogos en formación y la recertificación de los que ya están formados, sobre todo con los comentarios de los expertos en los casos que se publicarán en esta sección y así hacer efectiva la web 2.0
Gracias Fernando, tu pericia magistral nos inspira. Hay mucho por hacer con los hongos.
Es correcto Dra Dilia Martínez, hay muchas alternativas diagnósticas para evidenciar los agentes etiológicos de las Micosis, esa técnica del escarificado es la misma que se utiliza para la búsqueda de formas amastigotas en Leishmaniasis Cutánea Localizada y para la búsqueda de Bacilos Ácido Alcohol Resistentes en Hansen. Claro que es operador dependiente, pero lo fácil del procedimiento, poco instrumental utilizado, económico y perentorio el resultado del frotis hace que ésta técnica sea necesaria en la Histoplasmosis diseminada a piel.